膜片钳单细胞传感器同步检测贝类中两类毒素

来源:Detection of paralytic shellfish toxins and tetrodotoxins in shellfish using a single-cell biosensor based on patch clamp technology.(Arch Toxicol)| 编译:DNA Lab Space

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导读

麻痹性贝类毒素(PSTs)与河鲀毒素(TTXs)是两类强效神经毒素,可同时富集于贝类组织中,对食品安全构成双重威胁。现有法规监测体系仅覆盖PSTs,而TTXs在多数欧盟国家尚未纳入常规监测。本研究开发了一种基于自动化膜片钳(APC)技术的单细胞生物传感器,利用Neuro-2a细胞的电压门控钠通道电流抑制效应,实现了两类毒素及其类似物的同步检测,检出限远低于现行监管限量,并在70余份实际样品中验证了其与参考方法的相关性。

研究背景

全球海产品需求持续增长,贝类因其高营养价值、高生产效率和较低环境足迹而扮演关键角色。然而,贝类的滤食特性使其极易富集海洋毒素。麻痹性贝类中毒(PSP)由摄入含石房蛤毒素(STX)及其类似物(统称PSTs)的贝类引起,这类毒素主要来源于亚历山大藻属等有毒甲藻的有害藻华。PSTs通过特异性阻断电压门控钠通道(VGSCs)发挥毒性作用。值得警惕的是,TTXs与PSTs共享相同的生物学靶点和作用机制,两者可同时存在于贝类中,构成叠加的神经毒性风险。现行法规仅针对PSTs设定监管限量(800 µg STX当量/kg),而TTXs未纳入常规监测,这一监管空白亟需填补。本研究提出以自动化膜片钳单细胞生物传感器作为毒理学分析工具,旨在实现两类毒素的同步检测。

研究方法

毒素标准品

STX及其类似物的认证参考标准品,包括脱氨甲酰基石房蛤毒素(dcSTX)、新石房蛤毒素(NEO)、脱氨甲酰基新石房蛤毒素(dcNEO)、N-磺基氨甲酰基膝沟藻毒素1和2(C1&2)、N-磺基氨甲酰基膝沟藻毒素3和4(C3&4)、膝沟藻毒素1和4(GTX1&4)、膝沟藻毒素2和3(GTX2&3)、脱氨甲酰基膝沟藻毒素2和3(dcGTX2&3)、膝沟藻毒素5(GTX5)和膝沟藻毒素6(GTX6),均购自CIFGA(西班牙卢戈)。TTX购自Tocris Bioscience(英国布里斯托尔),标准溶液以1%乙酸(v/v)配制成1 mg/mL浓度。

APC单细胞生物传感器检测STX和TTX

使用APC单细胞生物传感装置,通过监测Neuro-2a细胞钠电流的抑制情况,在电生理水平评估STX和TTX的单独及联合毒性。

TTX、STX 及摩尔比 1:1 的 TTX/STX 混合物对 Neuro-2a 细胞钠电流的抑制。生物传感器数据以每个细胞的最大电流归一化,并拟合至 S 型 logistic 四参数模型。每个点代表平均值 ± 标准差(n = 4)。
▲ TTX、STX 及摩尔比 1:1 的 TTX/STX 混合物对 Neuro-2a 细胞钠电流的抑制。生物传感器数据以每个细胞的最大电流归一化,并拟合至 S 型 logistic 四参数模型。每个点代表平均值 ± 标准差(n = 4)。

无论单独测试还是以1:1摩尔比联合测试,两种毒素均产生可比较的浓度依赖性抑制曲线(图1),表现出相同的半数抑制浓度(IC50)和高度相似的工作范围(IC20–IC80)。这些结果表明,在Neuro-2a细胞中,STX和TTX的毒性是等效且加性的。基于这一观察,本研究采用800 µg STX当量/kg的监管限量(Regulation (EC) No 853/2004)作为判断样品是否可安全食用的阈值。

STX和TTX类似物的毒性当量因子

通过APC单细胞生物传感装置监测Neuro-2a细胞钠电流抑制情况,评估dcSTX、NEO、C1&2、C3&4、GTX1&4、GTX2&3、dcGTX2&3、GTX5和GTX6在电生理水平的单独毒性。随后,毒性当量因子(TEFs)按STX的IC50值与各STX类似物IC50值的比值计算。

PSTs和TTX对Neuro-2a细胞钠电流的抑制作用。生物传感器数据以每个细胞的最大电流进行归一化,并拟合至sigmoidal logistic四参数模型。每个点代表平均值±标准差(n=4)。
▲ PSTs和TTX对Neuro-2a细胞钠电流的抑制作用。生物传感器数据以每个细胞的最大电流进行归一化,并拟合至sigmoidal logistic四参数模型。每个点代表平均值±标准差(n=4)。

如图2所示,所有STX类似物均诱导Neuro-2a细胞钠电流的浓度依赖性抑制。然而,其毒性效力与STX并不等效。在受试的STX类似物中,NEO效力最强(TEFAPC = 1.546),其次为GTX1&4、GTX2&3、dcSTX、dcGTX2&3、C1&2、GTX6、dcNEO和GTX5,其TEFAPC均小于1(表1)。

Non-specific inhibition of sodium currents in Neuro-2a cells by mussel, oyster, and marine snail (flesh and viscera) extracts. Biosensor data were normalised with respect to the maximum current of each individual cell. Each bar represents the average ± standard deviation ( n = 4)
▲ Non-specific inhibition of sodium currents in Neuro-2a cells by mussel, oyster, and marine snail (flesh and viscera) extracts. Biosensor data were normalised with respect to the maximum current of each individual cell. Each bar represents the average ± standard deviation ( n = 4)
在贻贝、牡蛎和海洋螺类(肉和内脏)基质存在下,STX对Neuro-2a细胞钠电流的抑制,贝类组织浓度为10 mg mL⁻¹。生物传感器数据按每个细胞的最大电流归一化,并拟合至S形逻辑四参数模型。每个点代表平均值±标准差(n = 4)。
▲ 在贻贝、牡蛎和海洋螺类(肉和内脏)基质存在下,STX对Neuro-2a细胞钠电流的抑制,贝类组织浓度为10 mg mL⁻¹。生物传感器数据按每个细胞的最大电流归一化,并拟合至S形逻辑四参数模型。每个点代表平均值±标准差(n = 4)。
使用APC单细胞生物传感器与仪器分析技术在施加TEFs后所获数据的相关性。显示了经线性回归调整得出的斜率(a)和相关系数(R)。
▲ 使用APC单细胞生物传感器与仪器分析技术在施加TEFs后所获数据的相关性。显示了经线性回归调整得出的斜率(a)和相关系数(R)。

表1列出了从Neuro-2a钠电流抑制曲线推导的PSTs和TTX的半数抑制浓度(IC50)及计算的毒性当量因子(TEFs)。为便于比较,同时给出了EFSA和FAO/WHO的TEF值。

TTX类似物的TEFAPC值先前已使用本研究所用相同的APC单细胞生物传感器在Neuro-2a细胞中测定(Reverté等,2024)。由于TTX和STX具有等效毒性,以STX替代TTX作为参考化合物不会改变先前确定的TEFAPC值。因此,TEFAPC值保持Reverté等(2024)所报道的结果:11-norTTX-6(S)-ol为0.238,11-deoxyTTX为0.107,6,11-dideoxyTTX为0.035,5,11-dideoxyTTX为0.027,5,6,11-trideoxyTTX为0.001。这些结果表明,除STX和TTX外,该生物传感器还能检测其毒性类似物。

研究结果

APC生物传感器对STX和TTX的检测

使用APC单细胞生物传感装置,通过监测Neuro-2a细胞钠电流抑制情况,在电生理水平评估了STX和TTX的单独及联合毒性。无论单独测试还是以1:1摩尔比联合测试,两种毒素均产生可比较的浓度依赖性抑制曲线(图1),表现出相同的IC50和高度相似的工作范围(IC20–IC80)。这些结果表明,在Neuro-2a细胞中,STX和TTX的毒性是等效且加性的。基于此,本研究采用800 µg STX当量/kg的监管限量(Regulation (EC) No 853/2004)作为判断样品安全性的阈值。

【数据】细胞系:Neuro-2a;毒素:STX、TTX;摩尔比:1:1;重复数:n=4;监管限量:800 µg STX当量/kg

STX和TTX类似物的毒性当量因子

通过监测Neuro-2a细胞钠电流抑制情况,评估了dcSTX、NEO、C1&2、C3&4、GTX1&4、GTX2&3、dcGTX2&3、GTX5和GTX6在电生理水平的单独毒性。TEFs按STX的IC50值与各类似物IC50值的比值计算。如图2所示,所有STX类似物均诱导浓度依赖性钠电流抑制,但毒性效力与STX不等效。NEO效力最强(TEFAPC = 1.546),其余类似物TEFAPC均小于1。各毒素的IC50值及TEFs详见表1。

【数据】NEO的IC50:21 nM,TEFAPC:1.546;GTX1&4的IC50:60 nM,TEFAPC:0.639;GTX2&3的IC50:170 nM,TEFAPC:0.214;dcSTX的IC50:123 nM,TEFAPC:0.029;dcGTX2&3的IC50:140 nM,TEFAPC:0.026;C1&2的IC50:174 nM,TEFAPC:0.021;GTX6的IC50:175 nM,TEFAPC:0.021;C3&4的IC50:236 nM,TEFAPC:0.015;dcNEO的IC50:601 nM,TEFAPC:0.006;GTX5的IC50:653 nM,TEFAPC:0.006;STX的IC50:41 nM,TEFAPC:1;TTX的IC50:41 nM;重复数:n=4

TTX类似物的TEFAPC值

TTX类似物的TEFAPC值先前已在Neuro-2a细胞中使用相同的APC单细胞生物传感器测定(Reverté等,2024)。由于TTX和STX毒性等效,以STX替代TTX作为参考化合物不改变先前确定的TEFAPC值:11-norTTX-6(S)-ol为0.238,11-deoxyTTX为0.107,6,11-dideoxyTTX为0.035,5,11-dideoxyTTX为0.027,5,6,11-trideoxyTTX为0.001。这些结果证明,除STX和TTX外,该生物传感器还能检测其毒性类似物。

【数据】11-norTTX-6(S)-ol的TEFAPC:0.238;11-deoxyTTX的TEFAPC:0.107;6,11-dideoxyTTX的TEFAPC:0.035;5,11-dideoxyTTX的TEFAPC:0.027;5,6,11-trideoxyTTX的TEFAPC:0.001

检出限与实际样品验证

该方法实现了37 µg STX当量/kg的检出限,远低于现行800 µg STX当量/kg的监管限量。在分析70余份具有多样化毒素谱的样品后,结果与参考方法的相关性表明,APC单细胞生物传感为PSTs和TTXs的同步监测提供了稳健且综合的工具。

【数据】检出限:37 µg STX当量/kg;监管限量:800 µg STX当量/kg;样品数:>70份

讨论与解读

现行毒素监测法规所考虑的单毒素评估可能不足以保护人类健康,因为当PSTs和TTXs共存时,可能低估受污染贝类消费相关的总体神经毒性风险。因此,应考虑采用综合分析策略同步监测PSTs和TTXs,以进行适当的食品安全评估。本研究提出的单细胞APC生物传感装置,在Neuro-2a细胞中证实STX和TTX对钠电流抑制贡献相等,毒性等效且加性。这与Finch等(2018)的报道一致——STX和TTX经口给予小鼠时表现出相同毒性。由于两者毒性等效且加性,任一毒素均可作为生物传感器响应的定量参考。事实上,该生物传感器对两种毒素化合物表现出相同的灵敏度。遵循建议将TTXs纳入PSTs组群的科学意见(Finch等,2018),本研究选择STX而非TTX作为参考化合物。

编译者解读

该研究的关键价值在于用功能读出(钠通道电流抑制)替代结构识别,天然实现了"总毒性当量"的整合检测——这恰好是监管端最需要的指标。方法学上,以STX为参考化合物统一量化PSTs和TTXs的思路,巧妙规避了TTX标准品供应受限的实际困难。检出限37 µg STX当量/kg远低于监管限值,动态范围覆盖了风险决策所需区间。局限在于Neuro-2a细胞系对两类毒素的等效响应是否在所有贝类基质中保持稳定,以及复杂基质对传感器长期运行的影响仍需更多现场数据支撑。该平台为多毒素同步监测提供了可转化的技术范式。

参考来源

Reverté J, Turner AD, Dhanji-Rapkova M, Klijnstra MD, Gerssen A. Detection of paralytic shellfish toxins and tetrodotoxins in shellfish using a single-cell biosensor based on patch clamp technology. Arch Toxicol. PMID: 42128918.

PMID: 42128918

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