凝胶染色脱色过度

来源:凝胶染色脱色过度(DNA Lab Space 实验教程)| 编译:DNA Lab Space

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跑完胶,染色时条带还清楚,脱色半小时后只剩Marker?或者背景干净得像没跑过。别急着扔胶,也别怪抗体。脱色过度多半不是单一原因,固定、染色、脱色液、胶厚、上样量、成像都可能坑你。下面按操作流程拆开,从新手低级错到进阶疑难,给你能直接照做的排查路径。

第一步:快速排查低级错误

1. 脱色液倒太多,胶泡在里面过夜。解决:脱色液刚没过胶,室温摇10-20分钟换一次,总30-60分钟停。

2. 染色液反复用,颜色都发灰。解决:新配0.1%考马斯亮蓝R-250,45%甲醇+10%乙酸,染色30-60分钟。

3. 脱色液酸醇太猛。解决:把甲醇降到10%、乙酸7.5%,或者用5%甲醇+7%乙酸,别用40%甲醇+10%乙酸脱色。

4. 染色前没固定,直接染完就脱。解决:先40%甲醇+10%乙酸固定30分钟,再染色。

教程配图2:凝胶染色脱色过度 排查流程示意
▲ 教程配图2:凝胶染色脱色过度 排查流程示意

第二步:分维度系统排查

1. 固定不充分。

现象:小蛋白条带先弱,大蛋白还在,胶边缘发白。

原理:甲醇/乙酸把蛋白沉淀在胶里,没固定就染色,染料只停在表面,一脱就掉。

解决:染色前固定30分钟,厚胶1.5 mm固定45分钟;固定液40%甲醇+10%乙酸,室温60 rpm。

验证:裁一条含Marker的胶,固定后直接染色不脱色,看条带是否清楚。若仍弱,查上样。

2. 染色不足。

现象

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