破解MLG生物合成最后一块拼图

来源:Microb Biotechnol | 编译:DNA Lab Space

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多糖是自然界中结构最复杂、功能最多样的生物大分子之一。混合连接β-葡聚糖(Mixed-linkage β-glucan,MLG)因其独特的流变学特性和结构特征,正成为生物技术领域备受关注的新型生物聚合物。然而,MLG生物合成机制的全貌尚未完全揭开,高效生产策略也仍在探索之中。一项发表于《Microbial Biotechnology》的最新研究,揭示了外膜蛋白TolC在MLG合成中的关键作用——它不仅是合成机器的核心组件,更成为工程化改造的突破口,使MLG产量在生物反应器条件下达到约10 g/L。

研究背景

MLG是一类由β-1,3和β-1,4糖苷键交替连接而成的葡聚糖,广泛存在于谷物细胞壁和某些细菌的胞外多糖中。在根瘤菌中,MLG的合成受第二信使环二鸟苷酸(c-di-GMP)调控,由双顺反子操纵子bgsBA介导。过去的研究已鉴定出BgsA(糖基转移酶)和BgsB(推测为膜相关蛋白)两个关键组分,但完整合成机器的组成以及如何实现高效生产,始终是悬而未决的问题。

TolC是革兰氏阴性菌中一种典型的外膜蛋白,通常参与多药外排和蛋白分泌系统。它是否与MLG合成有关,此前从未被报道。本研究以苜蓿中华根瘤菌(Sinorhizobium meliloti)为模式菌株,系统探究TolC在MLG生物合成中的功能,并基于此开发了高产工程菌株。

研究方法

菌株与培养条件

研究使用了多种根瘤菌菌株,包括S. meliloti、日本中生根瘤菌(Mesorhizobium japonicum)和菜豆根瘤菌(Rhizobium etli)。这些菌株常规培养于补充有3.40 mM CaCl₂·2H₂O的胰蛋白胨-酵母提取物培养基(TY)或最低培养基(MM)中。MM培养基每升含:10 g甘露醇、1.1 g谷氨酸钠、0.3 g KH₂PO₄、0.3 g K₂HPO₄、0.15 g MgSO₄·7H₂O、0.05 g CaCl₂·2H₂O、0.006 g FeCl₃和0.05 g NaCl,另添加1 mL 1000×维生素储备液(含0.2 g/L生物素、0.1 g/L盐酸硫胺素和0.1 g/L泛酸钠)。

S. melilotiM. japonicum菌株在28°C下培养,R. etli菌株则在30°C下培养。用于克隆和接合的E. coli菌株在37°C的LB培养基中培养。抗生素使用浓度如下:四环素(Tc)10 μg/mL(R. etli中为5 μg/mL)、卡那霉素(Km)50 μg/mL、刚果红(CR)50 μg/mL、荧光增白剂(Calcofluor White,CF)200 μg/mL、IPTG 1 mM。所有质粒均通过E. coli β2163或S17.1供体菌株接合转移进入根瘤菌。

MLG产量测定

MLG产量通过地衣多糖酶(lichenase)消化后释放的葡萄糖当量进行定量,具体方法参照Marchante等人(2024)的流程。根瘤菌在含100 mL三角瓶中培养,每瓶装20 mL补充有适当浓度Tc的液体MM培养基。S. meliloti菌株在28°C、R. etli菌株在30°C下,以170 rpm振荡培养3天。初始OD600调节至0.05。

三突变体构建

为探究其他c-di-GMP调控的胞外多糖对MLG产量的影响,研究构建了三重突变体IBR606,同时缺失EPS II、EPS I和APS三种多糖的合成基因。具体而言,对wgcA(EPS II合成)、exoY(EPS I合成)和uxs1-uxe(APS合成)三个基因进行了框内缺失。突变依次引入,并通过PCR和表型分析双重确认。构建完成后,将IBR606的MLG产量与野生型进行比较。

过表达模块构建

为提升MLG产量,研究将tolCbgsBA和组成型活性双鸟苷酸环化酶基因pleD***共同过表达。其中,pJBpleD质粒通过表达组成型活性的双鸟苷酸环化酶来提高胞内c-di-GMP水平。对照组使用不含tolC的质粒。

Effect of other c‐di‐GMP‐regulated EPS on MLG production. Quantification of MLG in (A) Sinorhizobium meliloti 8530 (WT) and the triple mutant IBR606 (Δ wgcA Δ exoY Δ uxs1‐uxe ) carrying either the control plasmid pJB3Tc19 or pJBpleD*, and (B) Rhizobium etli CFN42 (WT) and the Δ celAB mutant carrying
▲ Effect of other c‐di‐GMP‐regulated EPS on MLG production. Quantification of MLG in (A) Sinorhizobium meliloti 8530 (WT) and the triple mutant IBR606 (Δ wgcA Δ exoY Δ uxs1‐uxe ) carrying either the control plasmid pJB3Tc19 or pJBpleD*, and (B) Rhizobium etli CFN42 (WT) and the Δ celAB mutant carrying

研究结果

三重突变体对MLG产量无显著影响

在生理c-di-GMP水平下,野生型S. meliloti 8530的MLG产量低于检测限。三重突变体IBR606(ΔwgcA ΔexoY Δuxs1-uxe)的MLG产量与野生型相比无显著增加。当引入pJBpleD质粒后,IBR606的MLG产量得到提升,略高于野生型,但差异未达到统计学显著水平。这一结果表明,S. meliloti*合成其他c-di-GMP调控的胞外多糖(EPS I、EPS II和APS)的能力对MLG产量没有重大影响。

TolC是MLG合成的必需因子

研究中最重要的发现是:tolC基因的遗传破坏完全消除了MLG合成,而回补(complementation)则恢复了MLG生产能力。这一结果清晰地表明,外膜蛋白TolC是S. meliloti中MLG生产不可或缺的组分。作者提出,TolC与BgsA和BgsB共同构成一个三组分复合物,实现聚合物的高效合成和/或分泌。

共过表达实现8倍产量提升

tolCbgsBApleD***共过表达后,MLG产量较不含tolC*的对照质粒提升了8倍。在生物反应器条件下,MLG产量达到约10 g/L。这一数据有力地证明了TolC在MLG生物合成中的核心作用,也展示了该遗传模块在规模化生产中的巨大潜力。

TolC is required for MLG production. (A) Plasmid structure of pJBpleD*9091 and its derivative pJBpleD*9091C overexpressing tolC , constructed in this work. (B) Quantification of MLG production in S. meliloti 2011 and their tolC mutant derivative. MLG levels were measured in the wild‐type strains and
▲ TolC is required for MLG production. (A) Plasmid structure of pJBpleD*9091 and its derivative pJBpleD*9091C overexpressing tolC , constructed in this work. (B) Quantification of MLG production in S. meliloti 2011 and their tolC mutant derivative. MLG levels were measured in the wild‐type strains and

模块可移植性验证

该遗传模块不仅适用于S. meliloti,还能在原本不产生MLG的根瘤菌宿主中实现从头合成。研究者将包含tolCbgsBApleD***的模块导入M. japonicum*,成功实现了MLG的异源生产。这证明了该模块的可移植性,为细菌底盘更换和合成生物学应用提供了可能。

TolC overexpression increases MLG yields in S. meliloti . (A) MLG production was quantified in the S. meliloti 8530 Δ bgsBA background harbouring pJB3Tc19, pJBpleD*9091, or pJBpleD*9091C plasmids. Data were normalized to total protein content and represent the mean ± SD from five independent experim
▲ TolC overexpression increases MLG yields in S. meliloti . (A) MLG production was quantified in the S. meliloti 8530 Δ bgsBA background harbouring pJB3Tc19, pJBpleD*9091, or pJBpleD*9091C plasmids. Data were normalized to total protein content and represent the mean ± SD from five independent experim

讨论与展望

这项研究有几个值得深思的亮点。TolC作为外膜蛋白,以往的功能认知多集中在药物外排和毒素分泌上,本研究将其与MLG合成直接挂钩,拓展了TolC的功能谱系。三组分复合物的提出也颇具巧思——BgsA负责糖链延伸,BgsB可能锚定在细胞膜上,TolC则在外膜侧提供通道,三者协作完成MLG的合成与分泌。

从应用角度看,8倍产量提升和约10 g/L的产量数据相当亮眼。更关键的是模块的可移植性——能在异源宿主中实现MLG从头合成,意味着未来可以根据不同宿主的特点优化生产策略。比如,M. japonicum生长速度快、遗传操作便利,可能成为MLG生产的优选底盘。

当然,这项研究还有进一步深化的空间。TolC与BgsA、BgsB之间的具体互作机制、三组分复合物的组装方式、以及MLG分泌的分子细节,都是值得追问的问题。原文摘要未详述这些层面的实验细节。另外,10 g/L是在生物反应器条件下的产量,摇瓶条件下的产量数据原文摘要未提供,两者之间的差距也暗示了发酵工艺优化的潜力。

MLG作为一种可再生的生物聚合物,在食品、医药和材料领域都有广阔的应用前景。这项研究不仅补全了MLG合成机器的最后一块拼图,更为其规模化生产提供了切实可行的工程策略。

参考来源

Ruiz-Sáez L, Pacheco PJ, Peinado J, Lloret J, Muñoz S. TolC Is Required for a Mixed-Linkage β-Glucan (MLG) Biosynthesis: Engineering Bacteria for MLG Overproduction. Microbial Biotechnology. PMID: 42552791.

PMID: 42552791

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