组合策略实现单色革盖菌漆酶在黑曲霉中的高效表达及其应用研究

来源:Improved expression of Cerrena unicolor Laccase in Aspergillus niger via combined strategies and its applications(Biochemical Engineering Journal)| 编译:DNA Lab Space

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导读

漆酶作为绿色环保催化剂在生物技术和工业领域应用前景广阔,但单色革盖菌(Cerrena unicolor)漆酶异构表达产量不足长期制约其商业化。本研究以黑曲霉为宿主,整合密码子优化、分子伴侣共表达及常压室温等离子体(ARTP)诱变三种策略,成功筛选出高产菌株OPT-HacA-M10,在50 L发酵罐中漆酶活性高达416.8 U/mL。重组漆酶rLac2在牛仔布漂白及霉菌毒素降解中展现出优异性能,为工业应用提供了可行方案。

研究背景

漆酶(苯二酚:氧氧化还原酶,EC 1.10.3.2)属于多酚氧化酶家族,能催化氧化多种酚类和非酚类芳香化合物,同时将分子氧还原为水。漆酶底物谱广泛且环境友好——利用空气中的分子氧作为最终电子受体,副产物仅为水,因此被认定为绿色环保催化剂,在食品、环境治理、纺织染料脱色和造纸等行业具有广泛应用。1883年Yoshida首次在日本的漆树中发现漆酶,此后随着生物信息学和分子生物学的发展,漆酶陆续在细菌、真菌和昆虫中被发现。目前研究最深入的是真菌漆酶和细菌漆酶,其中真菌漆酶底物特异性更广,在工业和农业领域应用潜力更大。Zhou等人通过mRNA-Seq方法发现单色革盖菌菌株6884含有六个漆酶基因。然而,该菌来源漆酶的异构表达产量不足,难以满足商业需求,高效表达体系的开发成为研究焦点。

研究方法

菌株、质粒与材料

黑曲霉VT-2(A. niger CICC2422)购自湖南鸿鹰生物科技有限公司(中国湖南)。DNA聚合酶(PrimeSTAR™ HS)、限制性内切酶和T4-DNA连接酶购自Takara Biotechnology(中国大连)。NEBuilder® HiFi DNA Assembly Master Mix(目录号#E2621L)用于多个DNA片段的连接。寡核苷酸由上海生工生物技术有限公司合成。One Shot® TOP10化学感受态大肠杆菌(Invitrogen)用于质粒扩增。2,2'-联氮-双(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)酯(ABTS)、愈创木酚、雷马唑亮蓝R(RBBR)、靛蓝、酸性红和丁香酸甲酯购自Sigma-Aldrich公司。黄曲霉毒素B1、玉米赤霉烯酮和呕吐毒素ELISA试剂盒由江苏苏微微生物研究有限公司提供。除非另有说明,所有化学试剂均为分析纯。本研究所用菌株、质粒和引物的详细信息见补充材料S1(表S1-S3)。

【数据】菌株:A. niger VT-2(CICC2422);试剂来源:Takara、Sigma-Aldrich、上海生工等;试剂盒:AFB1/ZEN/呕吐毒素ELISA试剂盒

单色革盖菌漆酶Lac2的生物信息学分析、模型构建与分子对接

漆酶Lac2的氨基酸序列从NCBI数据库获得(ID:QLF98712),使用SignalP6.0预测蛋白表达信号肽。ProtParam用于预测分子量、等电点和总平均亲水性(GRAVY)等理化参数。此外,使用BLASTP在PDB数据库进行同源结构的在线比对,进化树展示和序列比对分别使用MEGA11.0和ESPript3.0完成。最终蛋白三级结构建模后,使用Alphafold2和Rosetta relax优化侧链结构,选择最优结构模型与催化底物进行分子对接。六种底物分子结构分为两类:染料分子(雷马唑亮蓝R(RBBR)、靛蓝和酸性红)和真菌毒素(黄曲霉毒素B1、玉米赤霉烯酮和呕吐毒素),3D分子结构从配体结构数据库PubChem获取。漆酶Lac2蛋白与分子的对接构象使用CB-Dock2获得。

【数据】数据库:NCBI(ID: QLF98712)、PDB、PubChem;软件:SignalP6.0、ProtParam、MEGA11.0、ESPript3.0、Alphafold2、Rosetta relax、CB-Dock2

密码子优化

单色革盖菌漆酶基因Lac2由上海生工合成(NCBI参考序列:MT720692.1)。Lac2-OPT基因根据黑曲霉偏好密码子进行密码子优化(GENE Optimization,上海生工)。密码子优化过程中Lac2-OPT的氨基酸序列未改变。密码子优化后的Lac2-OPT基因已提交至NCBI Sequence Read Archive(登录号:OR742404)。

【数据】基因:Lac2(MT720692.1)、Lac2-OPT(OR742404);优化策略:黑曲霉偏好密码子;氨基酸序列:未改变

表达载体的构建

以pMD18-T-Lac2载体和密码子优化的pUC57-Lac2-OPT载体为模板,分别用引物Lac2-F/Lac2-R和Lac2-OPT-F/Lac2-OPT-R扩增全长Lac2和Lac2-OPT基因片段。黑曲霉表达载体pANEXP和分子伴侣载体pANpki的构建方法见补充材料S2中的图S1和S2。这些PCR片段设计为与pANEXP载体有30 bp重叠。随后通过NEBuilder® HiFi DNA assembly方法,将XbaI线性化的pANEXP载体与Lac2或Lac2-OPT片段连接,形成pANEXP-Lac2和pANEXP-Lac2-OPT载体。以相应的基因合成分子伴侣载体为模板(PUC-HacA、PUC-PDI、PUC-ERO1),用特异性引物对扩增编码分子伴侣HacA(AAQ73495.1)、PDI(XP_001400609.1)、ERO1(XP_001398061.1)和BIP(XP_001394413.1)的基因。采用相同方法,成功构建了pANpki-HacA、pANpki-PDI、pANpki-BIP和pANpki-ERO1等载体。

【数据】载体:pANEXP-Lac2、pANEXP-Lac2-OPT、pANpki-HacA、pANpki-PDI、pANpki-BIP、pANpki-ERO1;重叠长度:30 bp;分子伴侣基因:HacA、PDI、ERO1、BIP

原生质体转化及漆酶菌株筛选方法

按照Baltz等人建立的方案制备并转化黑曲霉VT-002菌株的原生质体,详细方法见补充材料S2。pANEXP-Lac2和pANEXP-Lac2-OPT质粒用Bgl II(Thermo Scientific,Waltham, MA, USA)线性化后,通过原生质体介导的转化分别转入黑曲霉VT-2。转化后的原生质体涂布在含有1 M山梨醇和潮霉素B(300 µg/mL)的马铃薯葡萄糖琼脂(PDA)平板上。为筛选产漆酶菌株,样品在30°C培养6天,然后用含0.1%愈创木酚的PDA培养基点接转化子。培养后根据颜色强度判断酶活性——颜色越深表示酶活性越高。在愈创木酚筛选培养基上呈现深色区域的菌落被转移至24孔深孔板,每孔加入2 mL马铃薯葡萄糖肉汤(PDB)培养基,继续培养3天。随后使用ABTS酶学测定法测量漆酶活性。根据酶活性,选择活性最高的前20株重组菌株进行初始摇瓶发酵。从这些菌株中,选择酶活性最高的菌株进行三次平行摇瓶发酵验证。

【数据】筛选培养基:PDA + 1 M山梨醇 + 潮霉素B(300 µg/mL);培养温度:30°C;培养时间:6天(平板)/3天(深孔板);筛选试剂:0.1%愈创木酚;检测方法:ABTS酶学测定法

分子伴侣共表达

选择漆酶活性最高的重组菌株作为宿主菌株。随后用表达分泌分子伴侣的线性化载体转化该菌株。转化后,原生质体在含有1 M山梨醇和Zeocin(100 µg/mL)的PDA琼脂平板上培养。从这些平板中,每种分子伴侣共表达重组菌株各筛选200个单菌落,使用愈创木酚筛选培养基进行筛选。筛选程序遵循前述漆酶菌株筛选方法。选择活性最高的重组菌株进行三次平行摇瓶发酵。

【数据】筛选培养基:PDA + 1 M山梨醇 + Zeocin(100 µg/mL);筛选数量:每种分子伴侣200个单菌落;筛选方法:愈创木酚筛选培养基

ARTP诱变及阳性突变菌株筛选

本研究采用ARTP系统(型号ARTP-II,北京思清源生物技术有限公司,中国北京)对漆酶酶活性最高的菌株进行诱变。菌株诱变方案基于Wang等人建立的方法。将10 µL原生质体悬浮液涂布在铁碟上,并暴露于等离子体射流中。诱变参数设置如下:处理功率120 W,气体流速10 slm(标准升/分钟),处理时间从0秒到300秒,间隔30秒。等离子体射流喷嘴与铁碟之间的距离保持在2 mm。随后对菌落进行计数并绘制存活率曲线。阳性突变菌株的筛选:在30°C培养6天后,用含0.1%愈创木酚的PDA培养基点接转化子。在愈创木酚筛选培养基上呈现深色区域的菌落被转移至24孔深孔板,每孔加入2 mL PDB培养基,继续培养3天。筛选方法遵循前述漆酶菌株筛选方法。选择活性最高的前20株重组菌株进行摇瓶发酵。突变体的遗传稳定性通过监测各代漆酶酶活性进行评估。

【数据】诱变仪器:ARTP-II;功率:120 W;气体流速:10 slm;处理时间:0-300 s(间隔30 s);喷嘴距离:2 mm;原生质体量:10 µL;培养温度:30°C;培养时间:6天

Molecular docking results obtained for laccase with molecules of RBBR: (a) Indigo; (b) Acid red; (c) Zearalenone; (d) Aflatoxin B1; (e) or vomitoxin (f). The redpurple models represent molecules. The yellow dashes indicate H-bonds. RBBR, Remazol Brilliant Blue R.
▲ Molecular docking results obtained for laccase with molecules of RBBR: (a) Indigo; (b) Acid red; (c) Zearalenone; (d) Aflatoxin B1; (e) or vomitoxin (f). The redpurple models represent molecules. The yellow dashes indicate H-bonds. RBBR, Remazol Brilliant Blue R.

研究结果

漆酶Lac2的生物信息学分析、模型构建与分子对接

通过PDB数据库序列比对,从不同物种中筛选出9个相似度超过60%的漆酶表达序列(补充材料S1:图S1)。序列比对显示漆酶的活性催化中心具有高度的位点保守性,由四个铜离子组成。去除前21个氨基酸的信号肽后,使用Alphafold2对漆酶Lac2的氨基酸序列进行局部结构预测,获得整体残基置信度得分(pLDDT)大于97的3D结构模型。使用Rosetta relax模块优化结构侧链。本研究通过CB-Dock2成功识别出漆酶蛋白的底物催化活性口袋C3,其中包含与T1Cu配位的活性位点H455。漆酶与六种底物的分子对接结果如图1所示,对接和位点分析的完整数据见补充材料S1:表S4。分子对接分析显示,RBBR与漆酶形成五个氢键,分别与氨基酸N264、G391、H455、A163和W454相互作用。靛蓝与漆酶在A163处形成一个氢键,而酸性红通过一个氢键与漆酶在H455处结合。结合能研究显示,漆酶Lac2蛋白与RBBR、靛蓝和酸性红的相互作用能分别为-8.4 kcal/mol、-8.3 kcal/mol和-7.1 kcal/mol。黄曲霉毒素B1通过A163和H455与Lac2蛋白相互作用。玉米赤霉烯酮通过W454和H455与Lac2相互作用。呕吐毒素与漆酶2蛋白D206、A163和G391形成四个氢键,但表现出最低的结合能。在真菌毒素降解方面,漆酶Lac2蛋白与玉米赤霉烯酮、黄曲霉毒素B1和呕吐毒素的Vina得分分别为-7.4 kcal/mol、-7.7 kcal/mol和-5.8 kcal/mol。

【数据】同源序列:9条(相似度>60%);pLDDT:>97;结合能:RBBR -8.4 kcal/mol、靛蓝 -8.3 kcal/mol、酸性红 -7.1 kcal/mol;Vina得分:ZEN -7.4 kcal/mol、AFB1 -7.7 kcal/mol、呕吐毒素 -5.8 kcal/mol;氢键数量:RBBR 5个、靛蓝 1个、酸性红 1个、呕吐毒素 4个

Construction and selection of recombinant A. niger expressing Lac2 and Lac2-OPT. (a) Electrophoresis pattern of PCR products for Lac2 and Lac2-OPT. Lane M represents the 250 bp DNA marker; lanes 1 and 2 are PCR amplification products of Lac2 and Lac2-OPT, respectively; (b) Comparison of the enzyme a
▲ Construction and selection of recombinant A. niger expressing Lac2 and Lac2-OPT. (a) Electrophoresis pattern of PCR products for Lac2 and Lac2-OPT. Lane M represents the 250 bp DNA marker; lanes 1 and 2 are PCR amplification products of Lac2 and Lac2-OPT, respectively; (b) Comparison of the enzyme a

表达Lac2和Lac2-OPT的重组黑曲霉的构建与筛选

如图2a所示,Lac2和Lac2-OPT被克隆并插入表达载体pANEXP。线性化后,通过原生质体转化转入黑曲霉VT-2。从200个单菌落中,选择酶活性最高的20个转化子进行摇瓶发酵。图2b显示,20株AN-Lac2-OPT菌株的平均酶活性显著超过AN-Lac2-WT菌株。分别选择酶活性最高的菌株进行发酵验证。AN-Lac2-WT和AN-Lac2-OPT的最高酶活性分别为9.8 U/mL和13.6 U/mL,分别由WT-18和OPT-3菌株实现(图2b)。值得注意的是,OPT-3相比WT-18酶活性提升了38.8%。

【数据】筛选数量:200个单菌落;最高酶活性:AN-Lac2-WT(WT-18)9.8 U/mL、AN-Lac2-OPT(OPT-3)13.6 U/mL;提升幅度:38.8%

共表达OPT-3与分子伴侣的重组黑曲霉的构建与筛选。(a) 四种分子伴侣基因PCR产物的电泳图谱。泳道M为250 bp DNA标志物;泳道1–4分别显示BIP、HacA、ERO1和PDI的PCR扩增产物
▲ 共表达OPT-3与分子伴侣的重组黑曲霉的构建与筛选。(a) 四种分子伴侣基因PCR产物的电泳图谱。泳道M为250 bp DNA标志物;泳道1–4分别显示BIP、HacA、ERO1和PDI的PCR扩增产物

共表达OPT-3与分子伴侣的重组黑曲霉的构建与筛选

为研究分子伴侣在增强Lac2-OPT于黑曲霉中表达的作用,克隆了四种分子伴侣基因——HacA、ERO1、BIP和PDI(图3a),并整合到pANpki载体中,获得重组质粒(pANpki-HacA、pANpki-ERO1、pANpki-BIP和pANpki-PDI)。线性化后转化入OPT-3菌株。如图3b所示,转化子HacA表现出最高的酶活性,达到20.8 U/mL,其次是BIP,活性为15.5 U/mL。ERO1和PDI均未显示出对Lac2表达的增强作用。基于这些结果,选择OPT-3-HacA进行进一步研究。

【数据】最高酶活性:HacA共表达株 20.8 U/mL;BIP共表达株 15.5 U/mL;ERO1/PDI:无增强效果;筛选菌株:OPT-3-HacA

ARTP诱变及阳性突变株的筛选。(a) ARTP诱变菌落;(b) 通过愈创木酚筛选平板筛选高酶活菌株;(c) ARTP致死率曲线及正突变;(d) 诱变株微量板发酵中的相对酶活;
▲ ARTP诱变及阳性突变株的筛选。(a) ARTP诱变菌落;(b) 通过愈创木酚筛选平板筛选高酶活菌株;(c) ARTP致死率曲线及正突变;(d) 诱变株微量板发酵中的相对酶活;

ARTP诱变及阳性突变菌株筛选

为进一步提高黑曲霉中漆酶的酶活性,采用ARTP诱变系统对OPT-3-HacA的原生质体进行诱变。图4c显示了黑曲霉OPT-3-HacA的致死率曲线和正突变率。ARTP诱变处理时间不仅影响致死率,还显著影响突变效率。为获得理想的突变率,处理时间对ARTP诱变至关重要。由于筛选优势突变菌株需要大量突变,引入了一种高通量筛选高产漆酶突变菌株的快速筛选方法。该方法包括以下模块:ARTP突变系统、愈创木酚显色平板筛选和24深孔板高通量筛选。经过五轮ARTP诱变筛选,初筛了约10,000株菌株。图4a和b展示了诱变后在PDA平板上培养的菌株以及转移到含0.1%愈创木酚的PDA培养基上菌株的显色区域。ARTP诱变后,通过愈创木酚比色筛选法分离出近200株酶活性增强的突变体。这些突变体随后被转移到24孔深孔板进行微量发酵,相对酶活性如图4d所示。根据酶活性选择的前20株突变体进行摇瓶发酵,结果如图4e所示。OPT-HacA-M10为最优菌株,漆酶酶活性最高达35.4 U/mL;与初始菌株OPT-HacA相比提高了68.6%。通过多代培养突变体并测定各代漆酶酶活性来评估OPT-HacA-M10的遗传稳定性。图4f显示,漆酶酶活性稳定维持在约35 U/mL,后续传代培养中的波动可忽略不计。

【数据】ARTP诱变轮数:5轮;初筛菌株数:约10,000株;筛选获得突变体:约200株;最高酶活性:OPT-HacA-M10 35.4 U/mL;提升幅度:68.6%;遗传稳定性:约35 U/mL(多代稳定)

重组菌株OPT-HacA-M10在50-L发酵罐中进行补料分批发酵生产漆酶。黑色方块:漆酶活性;红色方块:细胞生长;蓝色线:DO浓度。
▲ 重组菌株OPT-HacA-M10在50-L发酵罐中进行补料分批发酵生产漆酶。黑色方块:漆酶活性;红色方块:细胞生长;蓝色线:DO浓度。

50 L发酵罐中的放大生产

为进一步提高漆酶的表达量,对漆酶活性最高的OPT-HacA-M10在50 L发酵罐中进行了高密度发酵。如图5所示,在213小时的发酵过程中,漆酶产量持续增加,酶活性增长曲线近似S形曲线。在发酵罐中,黑曲霉细胞快速生长,在第93小时达到峰值湿重426 g/L。发酵96小时后,菌丝体断裂,导致溶解氧回升。漆酶在68小时至140小时间隔内表现出最快的生长速率。湿重法适用于高菌浓度样品,是测量丝状真菌生长的常用方法。细胞湿重与细胞数量之间存在线性关系。发酵结束时,湿细胞重达到峰值439 g/L,漆酶活性达到416.8 U/mL的高水平。

【数据】发酵罐体积:50 L;发酵时间:213 h;峰值湿重:426 g/L(93 h);最终湿重:439 g/L;最高漆酶活性:416.8 U/mL;快速增长期:68-140 h

重组漆酶rLac2的SDS-PAGE和Native-PAGE分析。(a) 漆酶生产的SDS-PAGE分析;M,分子量标记;泳道1–9,分别为21 h、45 h、68 h、93 h、116 h、140 h、164 h、188 h和213 h的培养上清液;(b) 漆酶生产的PAGE酶谱分析。
▲ 重组漆酶rLac2的SDS-PAGE和Native-PAGE分析。(a) 漆酶生产的SDS-PAGE分析;M,分子量标记;泳道1–9,分别为21 h、45 h、68 h、93 h、116 h、140 h、164 h、188 h和213 h的培养上清液;(b) 漆酶生产的PAGE酶谱分析。

重组漆酶rLac2的SDS-PAGE和Native-PAGE分析

SDS-PAGE分析显示,重组漆酶rLac2的分子量约为58–60 kDa(图6a),与其理论分子量56 kDa接近。使用Native-PAGE检测OPT-HacA-M10漆酶Lac2的表达,蛋白样品在凝胶上样前未经加热或SDS处理。随后通过观察ABTS(图6b)和愈创木酚(图6c)的颜色变化进行原位漆酶活性检测。Native电泳进一步以ABTS和愈创木酚为底物确认了漆酶活性。基于SDS-PAGE和Native-PAGE分析结果,推测漆酶编码基因已成功在黑曲霉中表达,且表达产物分泌到发酵液中。

【数据】分子量:58-60 kDa(SDS-PAGE);理论分子量:56 kDa;检测底物:ABTS、愈创木酚

重组漆酶Lac2的生化表征。(a)温度的影响;(b)pH的影响;(c)Lac2的热稳定性;(d)Lac2的pH稳定性;(e)金属离子的影响;(f)有机溶剂的影响。
▲ 重组漆酶Lac2的生化表征。(a)温度的影响;(b)pH的影响;(c)Lac2的热稳定性;(d)Lac2的pH稳定性;(e)金属离子的影响;(f)有机溶剂的影响。

重组漆酶rLac2的生化特性表征

以ABTS和愈创木酚为底物,测定了温度和pH对rLac2活性的影响。如图7a和b所示,对于底物ABTS和愈创木酚,rLac2表现出显著不同的最适反应温度和pH值。

【数据】底物:ABTS、愈创木酚;最适温度/最适pH:见图7a和b(原文未在节选部分详述具体数值)

讨论与解读

漆酶是具有显著生物技术潜力的环保催化剂。目前,单色革盖菌来源的漆酶已被应用于生物降解、生物修复、脱木质素和脱色等多个领域。漆酶的重组表达仍是一个重要的研究领域,受到广泛学术关注。虽然酵母是漆酶表达的常见真核宿主,但其产量低和过度糖基化限制了其工业应用。目前单色革盖菌漆酶的异构表达水平相对较低。值得注意的是,Macellaro报道平菇漆酶在黑曲霉中的表达量是酿酒酵母的175倍。因此,黑曲霉是一个有吸引力的选择,尤其是考虑到其蛋白质生产能力以及被普遍认为是安全的(GRAS)地位。本研究系统探索了Lac2在黑曲霉中的异构表达。最初选择黑曲霉强启动子PglaA驱动Lac2表达,并使用其天然信号肽引导漆酶分泌。该方法在摇瓶培养上清液中获得9.8 U/mL的漆酶酶活性,比毕赤酵母产漆酶高39倍。

编译者解读:本研究展示了"组合策略"在丝状真菌蛋白表达中的强大威力——单靠密码子优化仅获得38.8%的提升,引入分子伴侣HacA后进一步提升,而ARTP诱变最终将产量推至416.8 U/mL的工业级水平。这种"理性设计+随机诱变"的递进式策略值得借鉴。值得注意的是,分子伴侣筛选揭示了HacA(未折叠蛋白反应转录因子)而非氧化折叠相关的ERO1/PDI对漆酶分泌的促进作用最为显著,提示分泌通量而非折叠效率可能是限速步骤。牛仔布漂白和霉菌毒素降解(>94%)的双重应用验证,使该菌株在纺织和食品工业中具有直接转化价值。局限在于50 L罐放大与工业生产规模仍有距离,且霉菌毒素降解产物毒性未评估。

参考来源

Jiang Huang. Improved expression of Cerrena unicolor Laccase in Aspergillus niger via combined strategies and its applications. Biochemical Engineering Journal, 2024. DOI: 10.1016/j.bej.2024.109371

DOI: 10.1016/j.bej.2024.109371

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