CRISPR靶向添加CPS1基因不能恢复尿素循环缺陷iPSC的氮稳态

来源:Yale J Biol Med | 编译:DNA Lab Space

📎 相关工具:代谢通路设计

导语

CPS1缺乏症是尿素循环障碍中最严重的一种,患者反复发生高氨血症,常致昏迷甚至死亡。目前治疗手段包括低蛋白饮食、降血氨药物和肝移植,但均有明显局限。本研究将CRISPR/Cas9介导的CPS1基因靶向整合到患者来源iPSC中,再定向分化为肝细胞样细胞。结果发现,尽管外源基因实现稳定整合和表达,细胞仍然不能完成正常的尿素合成与氨清除,说明单基因“加法”并不足以重建氮稳态。

研究背景

氨是氨基酸分解代谢的主要毒性产物,必须在肝脏中通过尿素循环转化为无毒尿素排出体外。CPS1是尿素循环的限速酶,位于线粒体基质内,催化氨与碳酸氢盐生成氨甲酰磷酸。该基因发生致病性突变后,尿素循环功能严重受损,患者出生后即可出现高氨血症、呕吐、昏睡和脑损伤。即使经过积极的内科治疗,仍有许多患者最终需要肝移植。

基因治疗为CPS1缺乏症提供了另一种可能。传统病毒载体介导的基因表达往往无法长期稳定维持,且随机整合存在插入突变风险。CRISPR/Cas9技术可以在基因组的“安全港”位点实现精确的基因添加,使治疗基因随细胞基因组稳定遗传。iPSC技术则允许在体外获得患者特异性的肝细胞样细胞,用于评估基因修复策略的功能效果。然而,尿素循环涉及多个酶和转运体的协同作用,单基因添加是否能恢复完整代谢通路,仍是一个关键问题。本研究正是围绕这一疑问,在CPS1缺陷iPSC模型中进行了系统验证。

研究方法

研究者首先从CPS1缺乏症患者体细胞重编程获得iPSC,

Design and validation of CRISPR/Cas9 editing in iPSCs at the AAVS1 locus . A . Schematic of the overall CRISPR/Cas9 stra
▲ Design and validation of CRISPR/Cas9 editing in iPSCs at the AAVS1 locus . A . Schematic of the overall CRISPR/Cas9 stra
Differentiation of iPSCs to HLCs . A . Schematic diagram of the hepatic differentiation strategy. iPSCs are directed pro
▲ Differentiation of iPSCs to HLCs . A . Schematic diagram of the hepatic differentiation strategy. iPSCs are directed pro
Investigating the factors contributing to differential ammonia metabolism in unedited and edited HLCs . A . Fold change
▲ Investigating the factors contributing to differential ammonia metabolism in unedited and edited HLCs . A . Fold change

延伸阅读:更多代谢通路设计、多基因组装等合成生物学工具,可访问 DNA Lab Space

📎 相关文章

大肠杆菌代谢工程实现O-琥珀酰-L-高丝氨酸高效生产 09-12 从Gibson组装到无细胞表达 09-12 整合代谢工程与生物过程优化实现枯草芽孢杆菌表面活性素高产 09-12 基于染色质可及性的酿酒酵母基因表达水平多机器学习模型预测 09-12