蓝藻全细胞水解物增强酵母对植物生物质的生物燃料发酵

来源:Sustain Microbiol | 编译:DNA Lab Space

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导读

生物燃料发酵通常需要额外添加维生素和含氮化合物等营养补充剂,以维持酵母的代谢活性与生长。本研究利用一种简易的毫升级发酵瓶系统,证实光合蓝藻(Synechococcus sp. PCC 7002)的水解全细胞生物质可作为酵母发酵小麦秸秆和云杉水解液的营养补充来源。添加经溶菌酶处理的高氮蓝藻生物质(0.5%干重,w/v)后,小麦秸秆水解液的乙醇初始生产速率从6.7 ± 0.2 g L⁻¹ day⁻¹提升至18.7 ± 1.0 g L⁻¹ day⁻¹,提高近三倍。该策略为木质纤维素生物燃料发酵提供了一种可持续的替代营养方案。

研究背景

为减少温室气体排放并以碳中和方式驱动交通运输系统,人类亟需可持续方案替代化石燃料。生物炼制概念应运而生——将可再生资源加工为生物乙醇等先进燃料及其他可市场化产品。与原油炼制不同,生物炼制依赖对不同类型生物质的分步精炼,将其转化为分子组分。植物、藻类和蓝藻通过光合作用将太阳能转化为化学能,储存于糖类、纤维素、木质素和油脂等生物分子中。先进生物燃料以多种非粮作物为基础,涉及各类木质纤维素原料的利用。然而,酵母对植物材料的生物燃料发酵通常需要补充维生素和含氮化合物等营养素,以维持其代谢活性和生长——这是该工艺的关键瓶颈之一。

研究方法

发酵用小麦秸秆材料的制备

小麦秸秆(Triticum aestivum L.)在丹麦Skærbæk的Inbicon IBUS中试工厂进行水热处理。预处理第一步为水浸泡(80°C,5–10 min),随后材料被输送至反应器中,在不添加化学试剂的条件下进行水热处理(195°C蒸汽注射,12 min)。收集于塑料袋中并在4°C下储存的最终材料干重约为40% w/w。将商业纤维素酶制剂Cellic CTec2(Novozymes A/S,Bagsværd,丹麦;活性为120 FPU g⁻¹)按22.8 mg/g干物质的比例添加到预处理后的小麦秸秆中,同时加入柠檬酸钠缓冲液(50 mM,pH 4.8)和水。混合物置于100 ml蓝盖瓶中,在轨道摇床(150 rpm)上于50°C水解4天(Jørgensen 2009)。所得水解液通过离心收集,液体与固体部分分离后于4°C储存。

发酵系统设计与可靠性验证

为开发一种简单、小体积的乙醇产量测定方法,本研究设计并评估了小型发酵瓶的重量损失测量法。在碳水化合物发酵生成乙醇的过程中,乙醇产量与CO₂产量相关,理想条件下摩尔比为1:1。因此,发酵系统因CO₂气体逸散导致的重量损失可作为乙醇产量的度量指标。图1展示了该发酵瓶的设计——CO₂通过细针头释放,同时阻止O₂进入瓶内。

小规模发酵瓶装置示意图,用于乙醇产量测定。发酵过程中,葡萄糖被酿酒酵母代谢为乙醇和CO₂。CO₂通过针头逸出,导致瓶体重量可测量地减少,其减少量与乙醇产量相关。针头同时限制O₂进入,从而维持厌氧条件。
▲ 小规模发酵瓶装置示意图,用于乙醇产量测定。发酵过程中,葡萄糖被酿酒酵母代谢为乙醇和CO₂。CO₂通过针头逸出,导致瓶体重量可测量地减少,其减少量与乙醇产量相关。针头同时限制O₂进入,从而维持厌氧条件。

研究发现,葡萄糖发酵试验中的乙醇产量与发酵瓶重量损失相关(图2A)。基于多次发酵实验(n = 77),由CO₂损失测定的乙醇产量与HPLC分析测定的乙醇产量之间存在明确相关性(图2B):线性回归斜率为1.132(95%置信区间:1.101至1.163),y截距为−0.222(95%置信区间:−0.765至0.321),决定系数R² = 0.987。结果明确显示,重量法测定的乙醇产量与HPLC测定结果呈线性相关,证实了重量法能够可靠估算乙醇产量。

发酵系统设计验证。(A) S. cerevisiae 在含葡萄糖(40 g l⁻¹)的CBS培养基中瓶重损失(空心圆和虚线)及计算的乙醇产量(空心方和实线)。乙醇产量根据瓶重损失估算(见“材料与方法”部分)。同一发酵装置中通过HPLC测定的乙醇浓度也在三个时间点显示(黄色圆圈)。数值表示为平均值±标准差(n = 3)。(B) 由CO₂损失计算的乙醇浓度与
▲ 发酵系统设计验证。(A) S. cerevisiae 在含葡萄糖(40 g l⁻¹)的CBS培养基中瓶重损失(空心圆和虚线)及计算的乙醇产量(空心方和实线)。乙醇产量根据瓶重损失估算(见“材料与方法”部分)。同一发酵装置中通过HPLC测定的乙醇浓度也在三个时间点显示(黄色圆圈)。数值表示为平均值±标准差(n = 3)。(B) 由CO₂损失计算的乙醇浓度与

蓝藻生物质的制备

研究假设蓝藻生物质的氮含量对其作为酵母发酵营养补充剂的价值至关重要——蓝藻的高氮含量通常与高蛋白质及其他营养素含量相关(Forchhammer and Schwarz 2018)。在氮限制条件下,蓝藻会发生缺绿现象,此时细胞降解蛋白质、色素、核酸及其他细胞组分,C/N比显著升高。因此,为获得不同氮含量和营养组成的蓝藻生物质,Synechococcus分别在氮充足(N-replete)和氮限制(N-limited)条件下培养,分别产生高氮(N-high)和低氮(N-low)生物质。培养物在约65 h后收获,此时氮限制培养物已表现出缺绿现象。如预期所料,低氮生物质的叶绿素和藻胆蛋白含量显著低于高氮生物质,而碳水化合物含量则高于高氮生物质(表1)。生物质在使用前经酸水解或酶水解处理(详见“材料与方法”部分),具体方案见表2。选择这些处理方法是因为它们在生物质和细菌细胞降解中已有成熟应用——酸处理代表剧烈手段,而溶菌酶处理代表较温和手段,后者对生物分子的保留程度预计高于酸处理。

表1 蓝藻生物质组成

| 组分 | 高氮生物质(n = 2) | 低氮生物质(n = 4) |

|------|---------------------|---------------------|

| 碳水化合物(%干重) | 16 ± 1 | 44 ± 23 |

| 叶绿素(任意单位a) | 0.35 ± 0.01 | 0.18 ± 0.02 |

| 藻胆蛋白(任意单位a) | 0.28 ± 0.00 | 0.05 ± 0.03 |

a按Möllers et al. (2014)定义。

表2 添加到酿酒酵母发酵中的蓝藻生物质补充剂概况

| 补充剂 | 蓝藻生物质a | 收获后处理a |

|--------|------------|------------|

| #a | 低氮 | 溶菌酶,37°C加50°C |

| #b | 低氮 | 溶菌酶,37°C |

| #c | 低氮 | 酸水解,100°C |

| #d | 高氮 | 溶菌酶,37°C加50°C |

| #e | 高氮 | 溶菌酶,37°C |

| #f | 高氮 | 酸水解,100°C |

a详见“材料与方法”部分。

研究结果

葡萄糖发酵

为在最优发酵底物条件下测试酿酒酵母发酵系统,将含葡萄糖(40 g L⁻¹)的培养基分别补充不同预处理方式、不同氮含量的蓝藻生物质(0.5% w/v)(表1和表2)。图3A展示了96 h发酵时间进程实验,图3B展示了前24 h内的初始发酵速率。

Saccharomyces cerevisiae fermentation of glucose (A and B) or wheat straw hydrolysate (C and D) supplemented with different Synechococcus hydrolysates (0.5% w/v) depicted as CO 2 -loss profiles (A and C) and the ethanol production rates in the first 24 h (B and D). Fermentations #g and #h refer to f
▲ Saccharomyces cerevisiae fermentation of glucose (A and B) or wheat straw hydrolysate (C and D) supplemented with different Synechococcus hydrolysates (0.5% w/v) depicted as CO 2 -loss profiles (A and C) and the ethanol production rates in the first 24 h (B and D). Fermentations #g and #h refer to f

与不添加蓝藻生物质的对照(#g)相比,溶菌酶处理的高氮蓝藻生物质(#d和#e)获得了最高的发酵速率提升,约为3倍。低氮(#a和#b)或酸处理的蓝藻生物质(#c和#f)对发酵速率的影响小得多。酸处理的低氮蓝藻生物质(#c)甚至导致发酵速率略有下降,提示酸处理产生了抑制酵母的物质。这些结果证实,蓝藻生物质可作为酵母发酵的补充剂以增强葡萄糖产乙醇,且酶处理在营养 mobilization 方面优于酸处理。

小麦秸秆发酵

小麦秸秆是生物乙醇发酵的典型底物,添加酵母提取物等合成或复合营养素可改善其发酵性能(Jørgensen 2009)。为测试蓝藻生物质能否替代这些营养素,将小麦秸秆水解液补充以不同预处理方式、不同氮含量的蓝藻生物质(0.5% w/v)(表1和表2),并进行酿酒酵母发酵。图3C提供了96 h发酵时间进程。与不添加补充剂的对照发酵#g相比,除发酵#c(低氮、酸处理)外,所有添加补充剂的发酵初始速率均有所提升——#c的发酵曲线与对照几乎一致。添加#d和#e(高氮、溶菌酶处理)的发酵在48 h后分别达到最大CO₂损失75和77 mg,此后几乎没有增加;而添加#a和#b(低氮、溶菌酶处理)的发酵则需要72 h才达到相同水平。

云杉水解液发酵

云杉水解液的发酵实验同样显示蓝藻生物质补充剂的积极作用。以高氮、酶解蓝藻生物质(1.5% w/v)作为补充剂时,发酵的滞后阶段显著缩短,乙醇产量在更短时间内达到较高水平。作为对照,使用与CBS培养基相同的维生素补充剂时,发酵进程明显较慢。图4展示了各发酵条件下三个生物学重复的乙醇产量时间进程曲线。100%乙醇对应葡萄糖到乙醇的完美化学计量转化。未添加营养补充剂时未观察到乙醇产生(数据未显示)。

Time-course ethanol production during fermentations of spruce hydrolysates with high-nitrogen, enzymatic hydrolyzed Synechococcus biomass (1.5% w/v) (black squares with dashed lines) or a vitamin supplement identical to that used for CBS medium (white circles with full lines) (see the “Materials and
▲ Time-course ethanol production during fermentations of spruce hydrolysates with high-nitrogen, enzymatic hydrolyzed Synechococcus biomass (1.5% w/v) (black squares with dashed lines) or a vitamin supplement identical to that used for CBS medium (white circles with full lines) (see the “Materials and

讨论与解读

本研究证实,经预处理的蓝藻全细胞生物质可显著增强酿酒酵母对木质纤维素底物的乙醇发酵。具体而言,溶菌酶处理的高氮蓝藻水解物使小麦秸秆的乙醇生产速率提高约3倍,而酸水解生物质仅提高约0.5倍。低氮蓝藻生物质无论采用何种预处理方式,对发酵的影响均很小。云杉水解液的发酵同样受益于蓝藻补充,尤其在缩短发酵滞后阶段方面效果显著。

研究选择蓝藻制备营养补充剂,是因为这类生物的细胞壁容易被溶菌酶水解,从而允许采用相对温和的处理方式,保留并释放大量细胞组分(Möllers et al. 2014)。相比之下,微藻作为真核生物,具有多样且往往顽固的细胞壁结构,使细胞组分的降解和释放变得复杂(Shivakumar et al. 2024)。研究也测试了酸处理——这是生物燃料发酵中常用的生物质 mobilization 方法,但该方法往往降解许多对生长有价值的生物分子。

编译者解读

本研究的方法学亮点在于用重量损失法替代HPLC进行乙醇定量——简单、廉价、可高通量,且与HPLC结果高度吻合(R² = 0.987),这对资源有限的实验室尤其有吸引力。从合成生物学应用角度看,将光合蓝藻作为营养补充剂实现"以藻养酵母"的闭环设计,为木质纤维素生物燃料的可持续生产提供了新思路。不过,蓝藻培养本身的成本与规模化问题、以及不同批次生物质组成的波动性,仍是产业化前需要解决的现实挑战。酸处理对营养物质的破坏性结果也提醒我们:温和的生物处理手段往往优于剧烈化学处理。

参考来源

Donati VL, Blossom BM, Cannella D, Frigaard NU. Whole-cell hydrolysate of cyanobacteria enhances biofuel fermentation of plant biomass. Sustain Microbiol. PMID: 42576851.

PMID: 42576851

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