从黄芪到酵母:完整生物

来源:Front Bioeng Biotechnol | 编译:DNA Lab Space

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植物异黄酮是一类备受瞩目的次生代谢产物,在营养保健和制药领域潜力巨大。然而,依赖传统作物提取的方式既不经济,也难以持续。一篇发表于《Frontiers in Bioengineering and Biotechnology》的研究,通过代谢工程改造酵母细胞工厂,实现了异黄酮类化合物毛蕊异黄酮-7-O-葡萄糖苷(calycosin-7-glucoside, CG)的从头生物合成,摇瓶发酵产量达到47.60 mg/L。该研究不仅打通了从简单碳源到目标产物的完整合成路径,还展示了通过理性蛋白工程改造植物糖基转移酶底物偏好性的可行性。

研究背景

黄芪是一味重要的中药材,而毛蕊异黄酮-7-O-葡萄糖苷正是衡量黄芪药材质量的关键指标成分之一。这种异黄酮苷类化合物具有多种有益人体健康的生物活性,在功能食品和药物开发中备受关注。

问题在于,植物中这类活性分子的含量通常很低,从作物中大量提取既不经济,也对环境不友好。合成生物学提供了一条替代路径——在微生物宿主中重建植物天然产物的生物合成途径,实现"以菌产药"。酵母因其遗传操作便利、翻译后修饰能力强,成为构建异黄酮细胞工厂的理想底盘。

此前已有研究在微生物中实现部分异黄酮的合成,但完整合成CG的报道仍然有限。CG的生物合成涉及三步酶促反应:首先由O-甲基转移酶(OMT)催化大豆苷元(daidzein, DEIN)的4′-OH特异性甲基化生成芒柄花素(formononetin, FON);随后P450异黄酮3′-羟化酶(I3′H)在3′-OH位点引入羟基,将FON转化为毛蕊异黄酮(calycosin, CLN);最后经UDP-糖基转移酶(UGT)在7-OH位点连接葡萄糖基,生成终产物CG。每一步都需要筛选到活性适配的植物来源酶元件。

研究方法

植物候选基因的筛选与表达载体构建

研究团队首先采用体内活性测定策略,通过喂食相应底物来快速鉴定植物候选基因的功能。针对第一步甲基化反应,研究人员选取了四个OMT编码基因:来自葛根的PlOMT9、来自黄芪的AmOMT、来自紫花苜蓿的MsOMT8以及来自大豆的GmOMT2。这些基因被克隆到高拷贝载体p426GPD中,由强组成型启动子TDH3p驱动表达,分别构建成质粒pCG01-04。

随后,这些质粒被转化进入背景菌株IMX581中,挑取单菌落进行后续分析。在添加50 mg/L大豆苷元的条件下,摇瓶培养结果显示,仅携带PlOMT9基因的菌株ES02能够产生中等量的芒柄花素,产量为5.00 mg/L。其余三个OMT候选基因未检测到明显活性。

针对第二步羟化反应,研究人员测试了三个I3′H候选基因。来自黄芪的AmI3′H和来自蒺藜苜蓿的MtI3′H对底物芒柄花素表现出可检测的催化活性。原文摘要未详述该步骤的具体转化率和产物浓度。

碳源优化与关键前体供给

异黄酮类化合物的生物合成需要充足的前体供应。研究团队对碳源进行了系统优化,以提升代谢流向下游目标产物。原文摘要未详述具体测试的碳源种类及浓度梯度,但明确指出碳源优化是提高CG产量的关键策略之一。

更为重要的是,研究中采用了"利用和提供关键前体大豆苷元"的策略。这意味着在从头合成路径之外,研究者还探索了通过外源添加或代谢工程手段增强大豆苷元供给对CG产量的影响。原文摘要未详述大豆苷元的具体添加浓度和时间点。

辅因子工程

异黄酮生物合成途径中的P450酶系依赖NADPH作为电子供体,而甲基转移反应则需要S-腺苷甲硫氨酸(SAM)参与。研究团队对关键代谢辅因子的生物合成进行了工程改造,以增强这些辅因子的供给。原文摘要未详述具体改造的基因靶点和策略细节。

理性蛋白工程改造糖基转移酶

第三步反应由UDP-糖基转移酶催化。研究团队选取了特定的植物糖基转移酶,通过理性蛋白工程手段尝试改变其底物偏好性。原文摘要未详述具体突变位点、突变体文库构建方法及筛选流程,但明确指出这一策略的可行性得到了验证。

发酵条件

所有摇瓶发酵实验均在摇床培养条件下进行。原文摘要未详述具体的培养基配方、接种量、培养温度、摇床转速和发酵周期。最终在优化条件下,CG产量达到47.60 mg/L。

Engineering the complete biosynthesis of bioactive CG in yeast. A synthetic CG pathway was rebuilt and metabolically opt
▲ Engineering the complete biosynthesis of bioactive CG in yeast. A synthetic CG pathway was rebuilt and metabolically opt

研究结果

从头合成路径的打通

通过逐步筛选和组装植物来源的催化酶,研究团队成功在酵母中建立了CG的完整从头生物合成路径。从简单的碳源出发,经过甲羟戊酸途径、异黄酮骨架合成以及三步后修饰反应,最终获得了目标产物。

关键酶元件的鉴定

酶筛选结果显示,来自葛根的PlOMT9是有效的4′-O-甲基转移酶,能够在酵母中将大豆苷元转化为芒柄花素。在50 mg/L大豆苷元底物条件下,摇瓶培养的芒柄花素产量为5.00 mg/L。这一数据表明,尽管PlOMT9在植物中天然催化该反应,其在异源宿主中的活性仍有提升空间。

对于I3′H酶,来自黄芪的AmI3′H和来自蒺藜苜蓿的MtI3′H均表现出对芒柄花素的羟化活性。原文摘要未提供该步骤的具体产物浓度数据。

构建CG生物合成途径。(A
▲ 构建CG生物合成途径。(A

产量提升策略的效果

通过碳源优化、大豆苷元前体供给以及辅因子工程等多重策略的协同作用,CG的最终产量达到47.60 mg/L。这一产量是在摇瓶发酵条件下实现的,尚未进行发酵罐水平的放大验证。

值得注意的是,从5.00 mg/L的中间产物芒柄花素到47.60 mg/L的终产物CG,产量提升并非简单的线性关系。这表明后续的羟化和糖基化步骤效率可能较高,或者前体供给策略对整体代谢流的拉动作用显著。

糖基转移酶底物偏好性的改造

研究团队展示了通过理性蛋白工程改变植物糖基转移酶底物偏好性的可行性。原文摘要未详述改造前后的酶动力学参数变化,也未提供突变体的具体活性数据。但从研究结论来看,这一策略为后续优化CG合成路径提供了新的工程手段。

Optimizing carbon sources and DEIN biosynthesis to increase CG production. (A) Effect of different carbon sources on the
▲ Optimizing carbon sources and DEIN biosynthesis to increase CG production. (A) Effect of different carbon sources on the

讨论与展望

这项研究的核心价值在于打通了从简单碳源到CG的完整生物合成路径。47.60 mg/L的摇瓶产量虽然距离工业化生产还有距离,但作为概念验证,已经证明了酵母细胞工厂生产CG的技术可行性。

一个值得注意的细节是,研究选择了"利用和提供关键前体大豆苷元"作为策略之一。大豆苷元本身也是异黄酮类化合物,这意味着该平台在合成CG的同时,也可能具备生产其他大豆苷元衍生物的潜力。这种平台化的设计思路,可能为其他高附加值异黄酮的微生物合成提供参考。

理性蛋白工程改造糖基转移酶底物偏好性的尝试值得关注。糖基转移酶通常具有较宽的底物谱,但催化效率和区域选择性往往不够理想。通过蛋白工程手段优化其底物偏好性,有望提高CG合成路径中最后一步的转化效率。

当然,从摇瓶到工业规模,还有很长的路要走。发酵工艺的放大、产物提取纯化流程的开发、以及进一步提高产量和降低成本的代谢工程策略,都是后续研究需要面对的问题。但至少,这条从黄芪到酵母的合成路径已经被证明是可行的。

参考来源

Zhang W, Xu M, Wang L, Qiao X, Yang S. Efficient, complete biosynthesis of isoflavonoid calycosin-7-glucoside by metabolically engineered yeast cell factories. Front Bioeng Biotechnol. PMID: 42495113.

PMID: 42495113

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