模块化代谢工程改造大肠杆菌:1,4-丁二胺合成的增强与平衡

来源:J Genet Eng Biotechnol | 编译:DNA Lab Space

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大肠杆菌合成1,4-丁二胺的代谢路径长、分支多,单基因过表达往往顾此失彼。江南大学研究团队将整条路径拆成两个模块分别强化,再拼装回底盘菌株,让碳流既充足又均衡。这项工作发表在Journal of Genetic Engineering and Biotechnology,PMCID: PMC13449784。

研究背景

1,4-丁二胺(腐胺)是聚酰胺、医药和农药工业的重要平台化合物。生物法合成1,4-丁二胺以大肠杆菌为底盘,但天然路径受制于代谢流分配不均——前体α-酮戊二酸既要进TCA循环供能,又要分流到鸟氨酸路径最终生成目标产物。路径越长,调控越难,产量往往卡在某个中间代谢物上。

传统改造思路是单基因逐一过表达,但这样做容易造成代谢失衡:某个酶过量,底物堆积,下游跟不上;另一个酶不足,瓶颈转移,整体通量上不去。模块化代谢工程把路径按功能分区,每个模块内部协调优化,再把模块组合起来,理论上能同时解决通量和平衡两个问题。

Sun等人选择大肠杆菌MG1655和BL21(DE3)作为合成1,4-丁二胺的底盘菌株,JM109作为质粒构建的克隆宿主。他们把整个合成路径重新定义为两个模块:1,4-丁二胺生产模块(模块1)和α-酮戊二酸生产模块(模块2)。前者负责从鸟氨酸往下游转化,后者负责强化TCA循环中α-酮戊二酸的供给。

研究方法

菌株与培养条件

实验用三株大肠杆菌:MG1655和BL21(DE3)作为合成1,4-丁二胺的工程底盘,JM109作为质粒克隆宿主。质粒和菌株构建过程中,细胞在含相应抗生素的LB固体平板上培养。抗生素使用浓度如下:卡那霉素50 mg/mL,氨苄青霉素80 mg/mL,氯霉素25 mg/mL,链霉素50 mg/mL。

目标基因用匹配引物从相关宿主基因组DNA扩增。异源基因以大肠杆菌MG1655和谷氨酸棒杆菌(Corynebacterium glutamicum)13032基因组为模板扩增。所用质粒和菌株列于补充表1,引物列于补充表2。

质粒构建

pRSM3载体用Nde I和Kpn I或Xho I双酶切。酶切后的载体与目标片段具有相同的粘性末端(Nde I和Kpn I或Xho I),随后用连接酶将双链DNA连接,构建pRSM3表达质粒。

pACM4、pCDM4、pRSM3和pETM6四个质粒具有四个重要酶切位点:Bln I、Xba I、Nhe I和Spe I。这四个限制性内切酶的粘性末端都是CTAG,因此被称为同四聚体酶。在基因串联构建过程中,利用同四聚体质粒,先将待过表达基因通过Nde I和Xho I构建到原始质粒中,然后选择其中一个质粒作为载体,回收后用于后续串联。

1,4-丁二胺生产模块的代谢改造

根据大肠杆菌代谢路径分析,为促进1,4-丁二胺合成,研究聚焦于表达gdhAargBargCargDargJODC10六个基因。其中argJ是经过密码子优化后的谷氨酸棒杆菌来源基因,ODC10是筛选得到的异源基因。

研究构建了pRSM3-gdhA、pRSM3-argCB、pRSM3-argD、pRSM3-argJ*和pRSM3-ODC10质粒(图3-2a),并转入底盘菌株进行单基因过表达测试。

1,4-Butanediamine synthesis pathway. The green lines mean overexpression, and the red mean deletion. PTS: Phosphotransferase system; G-6-P: Glucose-6-phosphate; AKG: 2-oxoglutarate; F-6-P: Fructose-6-phosphate; SUC-CoA: Succinate-CoA; PEP: Phosphoenolpyruvate; SUCC: Succinate; PYR: Pyruvate; FUM: Fu
▲ 1,4-Butanediamine synthesis pathway. The green lines mean overexpression, and the red mean deletion. PTS: Phosphotransferase system; G-6-P: Glucose-6-phosphate; AKG: 2-oxoglutarate; F-6-P: Fructose-6-phosphate; SUC-CoA: Succinate-CoA; PEP: Phosphoenolpyruvate; SUCC: Succinate; PYR: Pyruvate; FUM: Fu

研究结果

单基因过表达对1,4-丁二胺产量的影响

在1,4-丁二胺生产模块中,分别过表达gdhAargCBargDargJ***和ODC10*五个基因,考察各基因单独过表达对产量的贡献。原文摘要未提供各单基因过表达菌株的具体产量数值,但研究通过这一系列单基因测试,筛选出对1,4-丁二胺合成贡献最大的关键基因,为后续模块内多基因组合优化提供依据。

模块化路径重构的整体设计

研究将大肠杆菌1,4-丁二胺合成路径重新划分为两个模块:模块1为1,4-丁二胺生产模块,模块2为α-酮戊二酸生产模块。这种划分基于对代谢路径的系统分析——1,4-丁二胺合成与鸟氨酸生产密切相关,而鸟氨酸又来自α-酮戊二酸。改造TCA循环等中心碳代谢路径,会改变胞内代谢流的方向和速度,影响代谢环境的稳态。

为实现代谢路径的合理有序改造并维持胞内代谢平衡,研究采用模块化策略:模块1强化目标产物合成路径,模块2强化前体α-酮戊二酸的供给。两个模块分别优化后再组合,使碳流既充足又均衡地流向目标产物。

大肠杆菌中1,4-丁二胺的代谢途径
▲ 大肠杆菌中1,4-丁二胺的代谢途径

代谢路径的系统性改造逻辑

大肠杆菌合成1,4-丁二胺的代谢路径较长,与鸟氨酸生产密切相关。系统性工程改造时,必须考虑TCA循环等关键中心碳代谢路径。改变这些路径会改变胞内代谢流的方向和速度,从而影响胞内代谢环境的稳态。

研究选择的六个基因覆盖了从α-酮戊二酸到1,4-丁二胺的完整转化路径:gdhA编码谷氨酸脱氢酶,将α-酮戊二酸转化为谷氨酸;argBargCargDargJ***编码鸟氨酸合成路径的系列酶;ODC10*编码鸟氨酸脱羧酶,直接催化鸟氨酸转化为1,4-丁二胺。这一基因组合既覆盖了前体供给,又覆盖了末端转化,体现了模块化设计"分段强化、整体平衡"的思路。

Determination results of 1,4-butanediamine production by single gene overexpression strain of 1,4-butanediamine production module; The *** symbol represents P < 0.001 compared with their controls. (a) Construction of a single-gene overexpression vector for the 1,4-butanediamine production module;
▲ Determination results of 1,4-butanediamine production by single gene overexpression strain of 1,4-butanediamine production module; The *** symbol represents P < 0.001 compared with their controls. (a) Construction of a single-gene overexpression vector for the 1,4-butanediamine production module;

讨论与展望

模块化代谢工程的核心优势在于"分而治之"。本研究把1,4-丁二胺合成路径拆成生产模块和前体供给模块,每个模块内部基因表达协调优化,再组合回底盘菌株。这种做法避免了单基因过表达时"木桶效应"的反复出现——补上一个短板,又露出另一个短板。

选择谷氨酸棒杆菌来源的argJ***并做密码子优化,说明异源基因的表达效率直接关系到路径通量。而ODC10*作为筛选得到的异源基因,其来源和筛选标准原文未详述,但这步筛选显然是整个模块化设计的关键环节——末端脱羧酶的活性直接决定最终转化效率。

研究停留在模块划分和单基因测试阶段,尚未给出模块组合后的最终产量数据。后续工作大概率会围绕模块内多基因共表达比例、两个模块间的强度匹配展开。原文摘要未提供具体产量数值和发酵条件,这为后续研究留下了数据空间。模块化框架已经搭好,往里面填什么参数、调到什么比例,是下一步要回答的问题。

参考来源

Sun X, Li Z, Sun Y, Li D, Zhao K. Enhancement and balance of 1,4-butanediamine biosynthesis in Escherichia coli based on modular metabolic engineering. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. PMCID: PMC13449784.

PMCID: PMC13449784

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