CRISPR干扰菌群丰度变化定量校正

来源:CRISPR干扰菌群丰度变化定量校正(DNA Lab Space 实验教程)| 编译:DNA Lab Space

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你做完CRISPRi,qPCR一跑,目标菌掉了,对照也掉了;16S相对丰度更热闹,和CFU对不上。别急着换引物。这类问题大概率出在归一化和采样偏倚。本文按构建、诱导、采样、提取、定量、校正六个环节,给你一套能落地的排查路径,覆盖qPCR、ddPCR和spike-in校正。

第一步:快速排查低级错误

  • gRNA克隆是空载:菌液PCR只出载体骨架条带,没有插入片段。直接挑单克隆送Sanger,别用混合质粒往下做。
  • 诱导剂浓度或时间记错:aTc母液反复冻融,实际浓度掉到一半。重新配1 mg/mL母液,-20°C避光分装,诱导时用200 ng/mL。
  • 采样体积不一致:这管取0.5 mL,那管取1 mL,16S总量当然对不上。固定取1 mL菌液,8000×g、4°C离心5 min,弃上清后立即-80°C冻存。
  • qPCR NTC有Ct<35:大概率是引物二聚体或气溶胶污染。换新 aliquots,反应体系配在超净台,NTC必须无Ct<35。
教程配图2:CRISPR干扰菌群丰度变化定量校正排查流程示意
▲ 教程配图2:CRISPR干扰菌群丰度变化定量校正排查流程示意

第二步:分维度系统排查

1. DNA提取偏倚让目标菌“凭空消失”

现象:16S相对丰度降了30%,qPCR绝对量只降8%,CFU不变。原理:厚壁菌、革兰阳性菌破壁效率低,提取柱对高GC DNA有保留差异。解决:取1 mL菌液,8000×g、4°C离心5 min;加0.1 mm锆珠0.1 g,30 Hz振荡60 s两次,间隔2 min;蛋白酶K终浓度200 µg/mL,56°C孵育30 min

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